L’imagerie fonctionnelle permet d’explorer les processus biologiques en temps réel et d’étudier les interactions moléculaires au sein des cellules et des organismes.

• Imagerie en fluorescence : observation des structures et des processus biologiques à différentes échelles, de la molécule unique à l’organisme entier, sur des échantillons vivants ou fixés.
• Analyse de la dynamique moléculaire : suivi des mouvements et interactions des molécules dans des cellules vivantes à l’aide de techniques avancées comme FRAP, FLIP, FDAP, photoactivation et photoconversion.
• Imagerie calcique et biosenseurs : suivi des variations de concentration de calcium et d’autres signaux biochimiques dans des cellules vivantes.
• Super-résolution confocale : amélioration de la résolution d’image au-delà de la limite de diffraction pour une visualisation plus détaillée des structures subcellulaires.
• Imagerie macroscopique : capture d’images de grandes zones biologiques tout en maintenant une haute résolution.
• Photomanipulation : techniques telles que la photolésion et l’optogénétique pour induire et étudier des modifications locales dans des échantillons biologiques.
• Imagerie spectrale et microspectroscopie confocale : analyse des signatures spectrales des biomolécules dans des échantillons biologiques.
• Imagerie confocale Raman : caractérisation chimique non invasive des échantillons biologiques.
• TIRF / PALM / STORM et suivi de particules uniques : observation des événements moléculaires uniques avec une résolution nanométrique.
• Interactions moléculaires : FRET, FLIM : étude des interactions entre biomolécules en fonction de leur proximité et de leurs propriétés photophysiques.
• Développement de workflows d’analyse de données : mise en place de pipelines pour le traitement et l’interprétation des données d’imagerie.